Способ получения функционально активных мембранных рецепторных белков

СОЮЗ СОВЕТСКИХСОЦИАЛИСТИЧЕСКИРЕСПУБЛИК 723126 9) Я . 1)5 С 12 Р 21/06 И ИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯСВИДЕТЕЛЬСТВУ К АВТОРСКО ГОСУДАРСТВЕННЫЙ КОМИТЕТПО ИЗОБРЕТЕНИЯМ И ОТКРЫТИЯМПРИ ГКНТ СССР(71) Институт биоорганической химии им. М,М,Шемякина(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ФУНКЦИОНАЛЪНО АКТИВНЫХ МЕМБРАННЫХ РЕЦЕПТОРНЪХ БЕЛКОВ(57) Изобретение относится к молекулярной биологии и структурно-функциональным исИзобретение относится к молекулярной биологии и структурно-функциональным исследованиям мембранных рецепторных белков, а именно, к разработке нового способа получения функционально активных мембранных рецепторных белков, основанного на трансляции 1 п ч 1 тго соответствующих мРНК в присутствии искусственных липосом и приводящего к получению встроенных в мембрану функционально активных рецепторных белков (т,е. их функциональной экспрессии).Особый интерес с.точки зрения фундаментальной биологии и прикладного использования полученной информации в медицине представляет изучение эукариотических мембранных рецепторов различных белковых факторов, гормонов,следованиям мембранных рецепторных белков, конкретно к разработке нового способа получения функционально активных мембранных рецепторных белков, основанного на трансляции 1 и ч 1 тго соответствующих мРНК в присутствии искусственных липосом и приводящего к получению встроенных в мембрану, функционально активных рецепторных белков (т.е. их функциональной экспрессии); Целью изобретения является упрощение способа. Создан новый способ получения функционально активных мембранных рецепторных белков путем трансляции 1 и чсго мРНК мембранного рецепторного белка и его котрансляционного встраивания в искусственные липосомы,неиромедиаторов, Детальное изучение молекулярных механизмов функционирования подобных рецепторов практически невозможно без клонирования их генов, их функциональной экспрессии в какой-либо гетерологичной системе и белково-инженерных исследований.Известен традиционный способ, используемый для функциональной экспрессии рецепторных мембранных белков - экспрессия в культивируемых линиях клеток млекопитающих или экспрессия в ооцитах африканской лягушки Хепорцз 1 аеч 1 з,К недостаткам этого способа относится его экспериментальная сложность, трудоемкость, дороговизна используемого специального оборудования и реагентов (особенно в случае культивируемых линийклеток) и низкий уровень синтеза белка (особенно в случае ооцитов Х, аечз). Известно использование систем синтеза белка и арго(экстракта из зародышей пшеницы, лизата ретикулоцитов кролика и др.) для экспрессии гетерологичных мембранных рецепторных белков путем их контрасляционной встройки в препараты экзогенныхмикросомных мембран,Однако, необходимость использования 10сравнительно труднодоступных препаратовмикросомных мембран из природных источников, а также необходимость очистки синтезированного рецептора от примесныхбелков природных мембран является недостатком и препятствует применению системтрансляции и инго со встраиванием белкав микросомные мембраны как альтернативы культурам клеток млекопитающих иооцитам Х, аечз. 20Целью изобретения является упрощение способа,Такое упрощение способа вызвано тем,что получение и использование искусственных липосом является более простым, чем 25получение и использование природных микросомальных мембран, применяемых в прототипе изобретения,Кроме того, дополнительными преимуществами являются; возможность 30упрощенного выделения и очистки синтезированного и котрансляционно встроенного в липосомы рецепторного белка послеокончания процесса трансляции и ч 1 го путем отделения липосом центрифугированием в ступенчатом градиенте плотности либодругим известным методом отделения липосом от раствора; возможность котрансляционной встройки синтезируемого белка влипосомы, имеющие различный липидный 40состав, расширяя таким образом экспериментальные возможности исследователя;отсутствие эндогенных мембранных рецепторов функциональная активность которыхможет интерферировать с активностью исследуемого рецептора, в искусственных липосомных мембранах в отличие отприродных микросомныхВ систему для трансляции и атго мРНКрецепторного мембранного белка вводят в 50качестве мембран искусственные липосомыдля обеспечения котрансляционной встройки в липосомную мембрану синтезируемогобелка.Для описания сущности предлагаемого 55изобретения ниже следуют примеры егоосуществления, В качестве типичного эукариотического мембранного рецепторногобелка в примерах использован зрительныйродопсин быка, обладающий структурным и функциональным сходством со многими эукариотическими рецепторами белковых гормонов и нейромедиато ров.П р и м е р 1. Транскрипция п итго кДНК родопсина быка, Матричная РНК, необходимая для экспрессии белков в предложенной системе, может быть как выделена из природных источников, так и синтезирована и чсго, Транскрипцию и ч 1 го кДНК зрительного родопсина быка осуществляют следующим образом,Линеаризованную ДНК плазмиды р 0236-1 (50 мкг/мл), полученную путем клонирования кДНК опсина быка в вектор рбЕМ 2 под контроль промотора ЯР 6, добавляют к раствору 40 мМ трис-НС, рН 7,5, 16 мМ МоС 2, 2 мМ спермидина, 40 мМ ДТТ, 1 ед/мкл ингибитора РНКаз из плаценты человека и 2,5 мМ каждого из 4 рибонуклеозидтрифосфатов и РНК-полимеразы фага ЯР 6 в концентрации 1 ед/мкл, инкубируют при 37 С 4 ч, Затем смесь последовательно экстрагируют равным объемом фенола, фенола-хлороформа (1:1) и хлороформа, мРНК очищают селективным осаждением 2,5 МС при 0 С 40 мин. Суспензию центрифугируют 20 мин при 10000 хо, осадок.растворяют в воде и 2 раза переосаждают 75 этиловым спиртом в присутствии 300 мМ ацетата натрия, Транскрипцию ведут в объемах от 50 мкл до 5 мл,П р и м е р 2, Получение липосом из фосфатидилхолина.Для получения липосом из фосфатидилхолина фосфатидилхолин из соевых бобов (200 мг) растворяют в 1 мл хлороформа, переносят в широкую стеклянную пробирку, и упаривают хлороформ током азота таким образом, чтобы липид образовал тонкую пленку на поверхности стекла, В пробирку добавляют 4 мл 10 мМ раствора ДТТ, охлаждают до 0 С и диспергируют ультразвуком 5 раз по 1 мин с перерывами 1 мин при постоянном охлаждении. Липосомы разделяют на аликвоты и хранят при ( - 70) С. П р и м е р 3. Трансляция и итго опсиновый мРНК с котрансляционной встройкой синтезируемого опсина в липосомыТрансляцию и и 1 го синтетической мРНК родопсина быка с котрансляционной встройкой синтезированного опсина в липосомы ведут в экстракте из зародышей пшеницы (50 объема трансляционной смеси) в присутствии 50 мМ ацетата калия, рН 7,5, 2 мМ ацетата магния, 3 мМ дитиотреитола, 0,08 мМ спермина, 1,2 мМ АТФ, 0,08 мМ ГТФ, 30 мМ креатинфосфата, 0,7 мг/мл креатинфосфокиназы, 250 ед. активности в 1 мл ингибитора РНКаз из плаценты человека, 50мкМ каждой из 19 аминокислот и 50 мкМ(14 С)В трансляционную смесь добавляютматричную опсиновую РНК до конечнойконцентрации 200 мкг/мл и липосомы изфосфатидилхолина до конечной концентрации 2,5 мг/мл липида. Трансляцию ведут в течение 120 мин при 23 С, Уровень синтеза белка определяют по включению радиоактивности в кислотонерастворимую фрак цию и вычисляют исходя из содержания лейцина в данном белке. Для этого аликвоту (5 мкл) трансляционной смеси наносят на бумагу Ватман ЗМ(1 х 1 см), которую выдерживают в холодной 100 -ной ТХУ 20 мин, а 15 за тем в кипящей 50 -ной ТХУ 10 мин, Фильтры затем промывают последовательно этиловым спиртом и диэтиловым эфиром, сушат и просчитывают в 5 мл сцинтиллятора Брея (на 1 л диоксана 80 г нафталина, 4 г 20 дифенилоксазола и 0,2 г ПОПОП) в жидкостном сцинтилляционном счетчике, Уровень синтеза родопсина в описанных условиях составляет 40 мкг белка на 1 мл трансляционной смеси. 25П р и м е р 4, Выделение липосом со встроенным опсином из трансляционной смеси, регенерация родопсина, тестирование его функциональной активности.Липосомы, содержащие котрансляци онно встроенный рекомбинантный родо- псин, выделяют из трансляционной смеси следующим образом.Трансляционную смесь разбавляют в 2 раза на холоду 20 мМ ЭДТА и инкубируют 35 10 мин, затем наслаивают на буфер, содержащий 30 мМ НЕРЕЯ - КОН, рН 7,5, 150 мМ ацетата калия, 5 мМ ДТТ и 0,2 М сахарозы и центрифугируют при 2 С 2 ч при 100000 х 9, Осадок суспендируют в том же буфере без 40 сахарозы, центрифугируют в тех же условиях 60 мин и хранят при ( - 70)С, Содержание рекомбинантного родопсина в мембранных фракциях определяют так же, как его содержание в трансляционной смеси, В описан ных условиях количество интегрированного в липосомы родопсина составляет 200 от всего синтезированного родопсина.Для подтверждения того, что белок действительно интегрировался в соответствую щие мембраны, применяют следующий метод.Мембранную фракцию суспендируют в 0,1 М Ка 2 СОз, рН 11,0, наслаивают на такой же буфер с 0,2 М сахарозы и центрифугиру ют при 2 С 2 ч при 100000 х 9.Затем осадок суспендируют в том же буфере без сахарозы и осаждают центрифугированием в тех же условиях 60 мин, Полученный осадок суспендируют в буфере с рН 7,5 и определяют содержание в нем рекомбинантного родопсина. Содержание родопсина в липосомах, подвергшихся отмывке при рН 11,0, уменьшается не более чем на 150 по сравнению с липосомами, не подвергавшимися такой отмывке.Регенерацию встроенного в липосомы опсина 11-цис-ретиналем проводят 30 мин при 4 С в присутствии 100-кратного молярного избытка 11-цис-ретиналя. При этом рекомбинантный родопсин приобретает характерный спектр с максимумом поглощения 500 нм, близкий к спектру природного родопсина,Реконструкцию зрительного каскада проводят в буфере, содержащем 40 мМ НЕРЕЯ - КОН, рН 7,8, 150 мМ МаС, 6 мМ М 9 ЯО 4, 3 мМ дитиотреитола. К исследуемому препарату рекомбинантного родопсина добавляют 10 мкг транслуцина и 5 мкг ФДЭ из сетчатки быка, и инкубируют 20 мин при 0 С в присутствии или в отсутствие 10 мкМ негидролизуемого аналога 6 ТР 5-гуанозинф у-имидо)трифосфата, Активность ФДЭ определяют по методу Страйера в 150 мкл того же буфера при 0 С 5 мин при концентрации цГМФ 1 мМ (250000 имп/мин (ЗН)цГМФ), Реакцию останавливают кипячением в течение 2 мин, добавляют 0,1 ед, активности фосфатазы из внутренностей теленка и ЛпС 2 до конечной концентрации 2 мМ, инкубируют 15 мин при 30 С и наносят на колонки 0,7 х 2 см с ДЭАЭ-Сефадексом. Продукт элюируют непосредственно во флаконы для сцинтилляционного счета и просчитывают в 10 мл сцинтиллятора Брея в жидкостном сцинтилляционном счетчике. Способность котрансляционно встроенного в липосомы зрительного родопсина активировать фосфодиэстеразу цГМФ зрительного каскада усиления не отличается от таковой природного родопсина из сетчатки быка,Таким образом, изобретение (способ получения мембранных рецепторных белков в функционально активном виде, основанный на липосомосопряженной трансляциип чтго их мРНК) позволяет достичь высокого уровня синтеза функционально активного зрительного родопсина быка в системе трансляции и н 1 сго из зародышей пшеницы с котрансляционным добавлением искусственных липосом, Структурное и функциональное сходство родопсина со многими другими мембранными рецепторными белками позволяет предложить данную систему функциональной экспрессии для других белков этой группы,Формула изобретения Способ получения функционально активных мембранных рецепторных белков,1723126 10 15 20 30 40 45 Составитель Н.СтерлиговаТехред М,Моргентал Корректор Э,Лончакова Редактор Н.Горват Заказ 1042 Тираж Подписное ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ СССР 113035, Москва, Ж, Раушская наб., 4/5 Производственно-издательский комбинат "Патент", г, Ужгород, ул,Гагарина, 101 включающий трансляцию и ятго мРНК мембранного рецепторного белка и его котрансляционное встраивание в мембрану, о т л ич а ю щ и й с я тем, что, с целью упрощенияспособа, в качестве мембраны используютискусственные липосомы,