Способ получения бактериальных суспензий
Похожие патенты | МПК / Метки | Текст | Заявка | Код ссылки
Номер патента: 1463754
Авторы: Бравова, Грязнова, Дуда, Капрельянц, Козлова, Лилле, Осипов, Островский, Помазанов, Сорокина, Шабанова, Эль-Регистан
Текст
СО 03 СОВЕТСКИХСОЦИАЛИСТИЧЕСКИРЕСПУБЛИК А 1 Б 46 4 С 12 Н 1/О ГОСУДАРСТВЕННЫПО ИЗОБРЕТЕНИЯМПРИ ГКНТ СССР ОМИТЕТ ОТКРЫТИ но-исследователь нологии и ИнстиД.Н.Островский,Н,Грязнова,а, Г,Б.Бравова,в, Е.А,Шабанова,Сорокина т. 46,АКТЕРИАЛЬНЫХ кр сится жет бы поль"рованстабил роорганизмов. эобретение хими логи эовано для полу ных мембран клеЦелью изобре лизация мембран так и находящих шенных клеток б к микроо ниэмов я стаб ени как изолир я в состав ктерий разл ванных неразручных мембр ан и в количестполяро грамл. Добавве субстраскоростьроль) . нтов, вызывающи ия на 507, Конрцина от 5 ОПИСАНИЕ ИЗОБР А ВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТ(71) Всесоюзный научский институт биотехтут микробиологии АН(57) Изобретение отнологии, биохимии и мозовано для получениных мембран клеток ми носится к микробио-. может быть испольния стабилизировант таксономических групп.П р и м е р 1. Суспенз Ю.сгососсця 1 уяоде 111.сця ве 1 мг белка/мл вносят в фнческую ячейку объемом 1 ляют НАДН и малат в качест тов дыхания, Регистрируют поглощения кислорода (конт Целью изобретения является стабилизация мембран как изолированных, таки находящихся в составе неразрушенныхклеток бактерий различных таксономических групп (что приводит к стабилизации клеток бактерий). В суспензию клеток бактерий и мембран микроорганизмов вносят стабилизирующийагент в концентрации (0,2-7,0)х10 Моль. В качестве стабилизирующего агента используют алкилрезорциныс насыщенными алкильными радикаламидлиной от 4 до 1 О атомов углерода,находящимися во 2-,4- или 5-м положении в бензольном кольце. Стабилизированные суспензии клеток бактерий и мембран микроорганизмов различных таксономических групп хранятсяв течение 0,5-2,0 лет при температуре 1-25 С 4 табл. Затем в ячеику дополнительно вносят алкилрезорцин до концентрации 5 10моль, через 1 мин после внесения регистрируют дыхание суспензии. После чего добавляют алкилрезорцин до концентрации АЙ 0моль, регистрируют дыхание суспензии. Операции 1повторяют при внесении алкилрезорци-ьнов до концентрации 1 О моль с шаго концентрации в два раза больше предыдущей,Полученные данные приведены в табл,1, где указаны концентрации стабилизирующих аге е ингибирование дыханцентрации алкилрезо1463754 51 О 20 25 40 45 50 5510 .6 моль до 0,210 моль не вызываютподавление дыхания на 507.П р и м е р 2. Культуру В,сегецявыращивают на жидкой синтетическойсреде следующего состава, г 7 л:ВНН РО, 1,0 КС 1 0,2) Мф 04 к 7 НО0,2; СаС 1 0,002; глюкоза 4; мясопептонный бульон 07, (об/об) при аэрации 1 л воздуха (1 л среды) достадии перехода вегетативных клеток встационарную фазу роста. Суспензикклеток В.сегеця с ОП = 2,0 вносятв полярографическую ячейку объемом1 мл. Опыт проводят согласно примеруПроведенные исследования показывают, что при внесении моно- и диалкилреэорцинов с насыщенным алкильнымрадикалом длиной от 4 до О атомовуглерода, находящимися во 2-, 4- или5-м положении в бензольном кольце вконцентрации 0,2-7,0 10моль, всуспензию изолированных мембран, таки клеток бактерий происходит ингибирование ферментов ЭТЦ, что свидетель -ствует об их стабилизации (табл.1).П р и м е р 3. В суспензию мембран М,1 уяос 1 еИ 1.сця вводят гидрофобный зонд пирена до конечной концентрации 15 мкМ. Во флуориметрическуюкювету помещают суспенэию мембран вколичестве 0,2 мг белка/мл. Регистрируют спектр флуоресцентности пиренапри возбуждении (335 нм). Из соотношения интенсивности флуоресцентностиэксимеров (470 нм) и мономеров(393 нм) оценивают параметры эксимеризации (контроль). В суспенэиюмембран с введенным зондом пиренавносят 5-С, алкилрезорцин в количестве 0,2-1,010 4 моль. Проводят измерения аналогично контрольномуварианту.Данные приведены в табл.2.Из полученных результатов следует,что параметр эксимериэации пиренаснижается по мере увеличения концентрации алкилрезорцина. Алкилрезорцин1существенно снижает латеральную диффузию липидов в мембране, что свидетельствует о стабилизации липидов в мембране.П р и м е р 4. Культуру В.сегецявырашивают на жидкой синтетическойсреде, состав которой приведен впримере 2,В одну часть суспензии В.сегецявводят алкилреэорцин 4-С, с конечнойконцентрацией 0,510 моль, а др 4гую до конечной концентрации 4-С 2,5 )О ф моль, Стабилизирующий агент вносят в суспензию вегетативных клеток в фазу замедленного роста (ОП =2,0), через 1 ч после внесения стабилизирующего агента клетки микро- скопируют, При рефрактометрическом определении степени рефрактильности клеток после внесения 4-С с конечной концентрацией 0,510М и 2,5 О- М установлено, что клетки приобретают степень рефрактильности (п) аналогичную бактериальным эндоспорам(и эндос пое1,47; п вегет, кл36 ф и, о- 1,42), Полярографическое определение дыхания клеточной суспенэии показывает. отсутствие поглощения кислорода, т.е. полное ингибирование ферментов ЭТЦ, На протяжении2 лет при хранении полученных суспенэий при температуре от 1 до 25 Сактивность ЗТЦ не выявляется, Клеткипри микроскопировании в фазовом контрасте не теряют высокой степенисветопреломления и сохраняют своюцелостность, Оптическая плотность клеточных суспензий за время хранения не меняется, что свидетельствует об отсутствии деградационных процессов.В табл.3 приведены условия стабилизации суспензии мембран М.1 уяойеЪхсця при внесении стабилизирующихагентов - алкилреэорцинов (4-С 5-С о), П р и м е р 5. В суспензию мембран М,1 уяодеЪгсця с количеством 2,0 мг белка/мл вносят 4-С, до конеч -ной концентрации 0,510М. Суспензию стабилизированных мембран хранятв течение 6 мес при 1 С, С периодичностью в 1 мес проверяют оксидазнуюактивность ферментов ЗТЦ при использовании в качестве субстрата малат,а также определяют оптическую плотность суспенэии. На протяжении всего периода хранения активность ЗТЦ не выявляется,ОП суспензии не снижается, Зто свидетельствует о стабилизации и сохранности мембранных препаратов,В табл, 4 даны условия стабилизации суспензий мембран В.сегеця привнесении стабилизирующих агентовалкилрезорцинов (4-С, 5-С,).П р и м е р 6, Условия проведенияопытов приведены в табл. 3. О стабильности суспензий мембран судят по пара1463754 таксономического положения бактерий,из которых выделены мембраны,и хранить стабилизированные суспензиибиологических мембран и клеток бактерий длительное время (0,5-2,0 года) в широком интервале температурот 1 до 25 С. Формула изобретения Способ получения бактериальных суспензий путем введения стабилизирующего агента, о т л и ч а ю щ и й - с я тем, что, с целью стабилизации мембран как изолированных, так и находящихся в составе неразрушенных клеток бактерий различных таксономических групп, в .качестве .стабилизирующего агента используютмоно- и диалкилрезорцины с насыщенными алкильными радикалами длиной 4-10 атомов углерода, находящимися в 2-,4- или 5 - м положениях в бензольном кольце, в концентрации (0,2"7,0)10 моль,Таблица 1 Ал О,б (НАДН) 0,6 (малат) 2,7 (НАДН), 5,0 (малат) 3,0 (НАДН) 1,1 3,5 70 Не ингиб р ует. 4 5-С" ф е и 1,2 (НАД 0,6 (НАД 0,25 (Н О, 7 (НАД 1, 1 (НАД адат) Н) 5-С 2-С 2-С3 2-С -5."С 1 О 9(м килрезорцины, имеющие алки нее 4-х атомов углерода, н адикалы с длинойтивны в указанзирующего агента. льные е эФф стаби о иапазоне концентраци метрам, описанным в примере 5, определения проводят с той жз периодичностью, данные соответствуют вышеприведенным ре зульт ат ам.П р и м е р 7. Опыты проводят аналогично примеру 5, но с суспензией мембран В. сегецз. Условия проведения опытов приведены в табл,4, Параметры, свидетельствующие о стабильности сус О пензии мембран В.сегеиз, определяют в соответствии с примером 5, с той же периодичностью. Результаты опытов идентичны данным 5 опыта примера 5,Таким образом, предлагаемый способ получения стабилизированных суспензий биологических мембран позволяет стабилизировать как изолированные 20 мембраны, так и находящиеся в составе неразрушенных клеток бактерий, что В последнем случае приводит к стабилизации клеток бактерий, стабилизи-:ровать мембраны вне зависимости от руюшая дыхание мембран с контролем, и 10мо ых мембран М.1 узойед 1 сзогенных субстратах1463754 Таблица 2 Концентрация5-С,10 М О 0)2 0,3 0,8 1,0 Эксимериэация 0,25 0,16 0,09 0,07 0,065 Таблица 3 Таблица 4 20 0 2 ,0 02 4 С 0,2 4-С 2,0 4 С 15 15 2,5 1,0 25 0,22,0 2,0 Примеч ани ловнях суспенэии в течение 6 мес. ых усло Примечание. Вукаэасуспенэни сохраняют стабнльнние 6 мес. е, В укаэанных усохраняют стабильност ь в теч Составитель А.ФедоровТехред Л.Олийнык Корректор И.Муска актор Г,Волков каэ 790/3 1 Тираж 500 Подписноеарственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ С113035, Москва, Ж, Раушская наб., д. 4/5 В оиэводственно-издательский комбинат "Патент", г. Ужгород, ул. Гагарина,101 2,0 0,2 2,0 2,0 С ь -С1 О а -Со -С 1 о 0,5 2,5 0,5 2,5 0,5 2,5 151115
СмотретьЗаявка
4189207, 30.01.1987
ВСЕСОЮЗНЫЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ БИОТЕХНОЛОГИИ, ИНСТИТУТ МИКРОБИОЛОГИИ АН СССР
КАПРЕЛЬЯНЦ АРСЕНИЙ СУМБАТОВИЧ, ОСТРОВСКИЙ ДМИТРИЙ НИКОЛАЕВИЧ, ЭЛЬ-РЕГИСТАН ГАЛИНА ИВАНОВНА, ГРЯЗНОВА МАРИНА НИКОЛАЕВНА, ДУДА ВИТАЛИЙ ИОСИФОВИЧ, КОЗЛОВА АЛЛА НИКОЛАЕВНА, БРАВОВА ГАЛИНА БОРИСОВНА, ЛИЛЛЕ ЮВЕ ЭРНЕСТОВИЧ, ОСИПОВ ГЕОРГИЙ АНДРЕЕВИЧ, ШАБАНОВА ЕЛЕНА АЛЕКСАНДРОВНА, ПОМАЗАНОВ ВЛАДИМИР ВАСИЛЬЕВИЧ, СОРОКИНА АЛЛА ДМИТРИЕВНА
МПК / Метки
МПК: C12N 1/04
Метки: бактериальных, суспензий
Опубликовано: 07.03.1989
Код ссылки
<a href="https://patents.su/4-1463754-sposob-polucheniya-bakterialnykh-suspenzijj.html" target="_blank" rel="follow" title="База патентов СССР">Способ получения бактериальных суспензий</a>
Предыдущий патент: Устройство для микроэлектродного исследования биологических объектов в эксперименте
Следующий патент: Способ подготовки гидролизных сред для выращивания кормовых дрожжей
Случайный патент: Загрузочный ротор