Способ определения степени воздействия на микрофлору активного ила физических и химических факторов внешней среды

ОП ИСАНИЕИЗОБРЕТЕНИЯК АВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ Союз СоветскнкСоциалнстнческикРеспублик 0998505(51)М. Кл. С 12 Ц 1/02 //С 02 Р 3/00 с прнсоелннением заявки М ГееуаЕстюва квинтет СФЮР ае делен зееретеяяе н етерытнй(23) П р нор итет Опубликовано 23. 02. 83, Бюллетень РВ 7 Дата опубликования описания 25 02. 83(71) Заявитель Бакинскии филиал Всесоюзного научно исслеженеюьакого=института водоснабжения, канализации, гидротехническихсооружений и инженерной гидрогеологии "ВОДГЕО" 54) СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ СТЕПЕНИ ВОЗДЕЙСТВИЯ НА МИКРОФЛОРУ АКТИВНОГО ИЛА ФИЗИЧЕСКИХ И ХИМИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ Изобретение относится к способам .исследования микроорганизмов, применяемых для биохимической очистки сточных вод, и может быть использовано для выявления факторов, влияющих на эффективность работы аэрационных 5 очистных сооржений.Работа любого аэрационного очистного сооружения определяется условиями внешней среды, из которых, помимо наличия источников С, М, Р и других, существенное влияние оказывают присутствие структурных аналогов основного загрязнителя, температура, концентрация тяжелых металлов, обеспеченность кислородом и солнечная радиация.Известен способ определения степени воздействия факторов среды, в частности промышленных сточных вод,20 на микроорганизмы, заключающийся в том, что испытуемое вещество смешивается в различных соотношениях с жидкостью, содержащей сапрофитную 2микрофлору, например с бытовой жидкостью, и разливается в широкогорлые склянки.После приготовления смесей, а затем через 1, 3 6, 12, 24, 30, 36 и 48 ч и каждые последующие сутки из содержимого склянок производят посевы на чашки с агаризованной средой для учета бактерий.Вывод о безвредной концентрации испытуемого вещества делается путем сопоставления результатов бактериологических, микроскопических и химических анализов1 1.1Недостатками методики являются трудоемкость определения, его длительность до 15 и более суток, а также возможность погрешности за счет ослабления диффузии. кислорода в опытные склянки при развитии на поверхности пленки микроорганизмов.Поскольку опытная склянка с большим содержанием токсичных компонентов имеет повышенное значение хими20 ЯосаЕЕ ЕнЭОосха нОкхх хсо+с оо гсо с: Юо а 1- о С м м сч а л л 1О сЧ а о л со сч СОо о т м ШЭа1О эчоО г-.с.г ФЭа1О сэЧОО г ШЭа1О очоО:тсШ Э а 1 О ) чоО Ю с а Э а 1 О ы чо О со ШЭ оао1- аО =гчО О 1ч 1О Эч уэ хФ 1 Эа фаО очо эОю кс Ю о О0 м о о о м м Ю о оС оЧ с ц ц цЮ олО о о О Ю О м м 1 1 1 1 1 126 Таблица 3 998505 Условия:лродные (к),бескислородные (/к) Образец Скоростьокисления,Ф,к контролю Скоростьокисления по веществу,мг/л .ч Внесенои-крезьлмг/л ДобавленоСцили Ад+1или 3 мг/л Времяподкисления повеществу, мг/л 100 1 ОО 320 150 360 164 10 1 мин 50 с12 мин1 мин 40 с Контроль 30 10 1-Сц1-Сц 23 "Сц 2+3-Сц 2 112 11 мин 30 10 3 30 1-Ад1-А 93-Ад+ 1 О 30 10 б/к 10 Контроль 100 7 8 30 10 13 мин30 мин1 .мин 30 с9 мин 50 с2 мин 20 с11 мин 103010 10 30 ределения, в качестве субстрата используют фенол. или его оксипроизвод,ные при концентрации 10-30 мг/л,2. Способ по и. 1, о т л и ч а ющ и й с я тем, что, с целью опреде" ления обратимости воздействия факторов внешней. среды на микрофлору активного .ила, контактирование образ"1 цов с субстратом,осуществЬяют как.сразу же после воздействия фактора, .так и в интервале до 48 ч после воздействия.Способ по и. 1, о т л и ч а ющ и й с я тем, что, с целью обеспе" Ячения определения степени воздействия факторов среды в зависимости от окислительно-восстановительных усло:,вий, часть образцов выдерживаютперед контактированием с субстратом формула изобретения 1-Сц1-Си3-Сц 2+1-Ад+А 93-Ад+3-Ад Способ определения степени воздействия на микрофлору активного ила . физических и химических факторов внешней среды, предусматривающий контактирование .подвергнутых воздействию факторов (опытных) и конт-рольных образцов микрофлоры с субст ратом в условиях аэрации, фиксацию результатов окисления субстрата путем непрерывной регистрации изменения во времени показателей 02 и/или рН и сравнение продолжительности окис" ления субстрата по времени потребления кислорода и/или подкисления среды в контрольных и опытных образцах, о т л и ч а ю щ и й с я тем, что, с целью повышения точности оп 2 мин 50 с 13 мин 2 мин 30 с 13 мин 28 минмин 20 с 9 мин 00 с 2 мин 210 138 240 138 21,5 450 200 300 13820 400 183250 164 109 65 91 75 91 6,7 100 75 76.4,6 91 92 55 8227, 998505 28 в условиях аэрации, а часть - в бес. Куликов А.И., Васильева А.Н. кислородных условиях. Изучение воздействия токсинов на акйстойники информации, тивный ил с применением респирометпринятые во внимание при экспертизе рической аппаратуры. Труды институ 1. Калабина М .М. Методы определе-та ВОДГЕп "Научные исследования ния токсичности промышленных сточных в области механической и биологичесвод и их отдельных компонентов. кой очистки промышленных сточных вод. гигиена и санитария", 1945, У 4, М 1979, с. 104-111. о б аВреми, ча 7,0 1, Время, часФиг998505 в Рош орректоц Еодписное д. 4/5еееееа роектная, 1 Редактор Н. РогличЗаказ 1074/45ВНИИПИ Государстпо делам изоб113035 МоскваВ йфилиал ППП "Патен с Я цлнФмяоон ф/, ф3 998505 цов микройлоры с субстратом в условиях аэрации, фиксации результатовокисления субстрата путем непрерывной регИстрации во времени показателейС /или рН и сравнении продолжительности окисления субстрата по временипотребления кислорода и/или подкисления среды в контрольных .и опытныхобразцах, причем в качестве субстрата используют фенол или его оксипроизводные при концентрации 10-30 мг/л. При этом, с целью определения обратимости воздействия Фактороввнешней среды на микрофлору активного ила, контактирование образцов с субстратом осуществляют как сразу же после воздействия фактора, так и в интервале до 48 ч после воздействия.С целью обеспечения определения степени воздействия факторов среды в зависимости от окислительно-восстановительных условий, часть образцов выдерживают перед контактированием с субстратом в условиях аэрации, а часть - в бескислородных условиях,При окислении фенолокисляющей микрофлорой избытка субстрата, т.е. при концентрации фенольных соединений (фенол, крезолы) в пределах 10-30 мг/л последние миллиграммы этих соединений.окисляются с возрастающей скоростью. Это дает возможность более точной регистрации (до 3-5 с) момента завершения окисления, при котором потребление кислорода и выделение двуокиси углерода микро 35 Недостатком известного способа является то, что при рекомендуемой. дозе тест-субстрата время окисления даже в отсутствие токсина составляет 50-70 мин, а это не позволяет обнаруживать воздействие Факторов среды, резко и в короткий промежуток време- ни угнетающих дыхание микрофлоры активного ила или оказывающих обратимое воздействие, т.е. сужает пере чень задач, которые можно решать с его помощью.Целью,йзобретения является повышение точности определения степени воздействия Факторов среды на микро флоре активного ила.Указанная цель достигается способом определения степени воздействия на микрофлору активного ила физических и химических Факторов внешней среды, заключающимся в контактировании подвергнутых воздействию фактора опытных) и контрольных образфлорой резко и синхронно замедляются,что повышает чувствительность определения,ческой потребности в кислороде ХПК), то снижение ХПК, интенсивность обеих Фаз нитрификации и развитие микрофауны может лимитироваться не только, токсичностью испытуемой жидкости, но 5 и недостатком кислорода. Чувствительность способа таким образом зависит от реальных условий и варьирует в зависимости от них.Наиболее близким к предлагаемому 1 О по технической сущности является способ определения степени воздейст,вия на микрофлору активного ила Физических и химических Факторов внешней среды, предусматривающий контак тирование опытных и контрольных образцов микрофлоры с субстратом-ацетатом натрия в аэробных условиях, фиксацию результатов окисления субстрата путем непрерывной регистрации 20 изменения во времени показателей 02 и/или рН и сравнение продолжительности окисления субстрата по времени потребления кислорода и/или подкисления среды в контрольных и опытных образцах. Стандартная доза субстрата 400 мг/л, Фиксирование результатов окисления субстрата производится на диаграммной ленте в виде интегральной кривой с последую щим пересчетом в дифференциальную Форму. Вывод о токсичности вещества делается по увеличению времени окисления стандартной дозы ацетата натрия 2 "1. При использовании в качестве субстрата Фенольных соединений момент резкого замедления потребления кислорода и синхронного с ним уменьшения подкисления р 11 среды свидетельствует об исчерпанности субстрата, поскольку после начала движения указателей О и рН в сторону повышенныхзначений этих параметров летучие фенолы в жидкой фазе образца микрофлоры аналитически не обнаруживаются.Другим средством слежения и контролядействительной исчерпанности субстрата может служить внесение в образцы микрофлоры 1-2 мг/л фенольных соединений, сопровождаемое появлениемна кривой 02 и рН ступенчатого изгиба лишь в том случае, если потребление кислорода и подкйсление среды5 9935 уже уменьшились, что объясняется активизацией ферментных систем микроорганизмов вследствие появления в ок-. ружающей среде незначительного количества субстрата, дополнительного по требления кислорода и выделения двуокиси углерода.В случае, если микрофлора исследуемого образца или очистного сооружения не реагирует на внесение 36 10-30 мг/л фенольных соединений ускорением потребления О или подкисления дН, то для решения поставленной задачи микрофлору необходимо предварительно адаптировать к этим соедине ниям, что достигается использованием известных технических решений, приемов.При внесении в образцы микрофлоры 10-30 мг/л фенольных соединений 20 время потребления кислорода и подкисления среды колеблется в пределах 1-15 мин, что позволяет обнаруживать воздействие факторов среды, резко угнетающих дыхание микрофлоры 25 активного ила.1Проведение определения сразу после воздействия и в интервале времени до 48 ч расширяет возможности спо- зо саба, позволяя различать факторы, воздействующие обратимо, от факторов, при которых воздействие и эффект разнесены во времени.Часть контрольных и опытных образцов выдерживает до внесения. субстрата в бескислородных условиях, причем, в этом случае, субстрат вносят спустя 5-10 мин после возобновления аэрации40Состояние и активность ферментных систем микроорганизмов зависят от окислительно-восстановительных условий. Поэтому выдерживание образцов микрофлоры в аэробных и анаэробных условиях дает возможность выявить факторы среды, воздействующие в этих условиях различным образом.Предварительная 5-10 мин азрация образцов микрофлоры восстанавливает использование молекул кислорода в качестве акцептора электронов и в то же время при удалении образовавшейся двуокиси углерода кривая рН перемещается в область нейтральных55 значений и выше, где момент резкого замедления выделения микрофлорой двуокиси углерода и поворот указате" ля РН в сторону повышенных значений 05 Ьможно зарегистрировать с большей точностью,С целью упростить ход определенияи исключить побочные воздействия,бескислородные условия создают засчет потребления кислорода микрофло"рой активного ила в обьеме образца.Использование для обескислорожйвания образцов микрофлоры продувки газом, например азотом, может усложнять ход определения, а использование для этой цели общепринятьх, реа"гентов, например %ЯО и СОС 12, мо"жет исказить результаты определения.Способ осуществляют следующим образом,Активный ил аэрационного сооружения, окисляющего фенольные соединения (фенол, крезолы), или адаптиро-:ванную к этим соединениям микрофлору разливают в стеклянные сосуды емкостью до 1 л.Емкость применяемых при определении сосудов и количество необходимого активного ила определяются размерами датчиков.При использованйи для регистрациипотребления кислорода анализаторарастворенного кислорода типа ЗГ, оптимальный объем ила равен1 л.Для регистрации подкисления средыс использованием Н-метра типа ЛПУ и потенциометра КСПдля каждого образца берут 0,1 л активного ила илиадаптированной микрофлоры с концент"рацией биомассы по сухому веществу(при 105 С в пределах 1- г/л.Определение начинают с регистрации на диаграммной ленте кривых потребления кислорода и подкислениясреды при внесении субстрата в контрольный образец микрофлоры,Предварительно в образец до днаопускают резиновую трубку, оканчивающуюся стеклянным капиляром иликерамическим распылителем, подсоединенную через ротаметр к воздушнойлинии или микрокомпрессору, например,типа ИК-Л 2. При аэрации образца срасходом воздуха в пределах 0,30,5 л/мин погружает в него на 1/2глубины сосуда датчик анализатора кислорода и/или на 1/2 длины электродрН-метра.Температуру образцов при определении поддерживают постоянной с помощью автоматического регулятора,например, типа ЗРА-И.7 99850При аэрации образцов микрофлоры кривая потребления кислорода переходит на плато, определяемое расходом кислорода на эндогенное дыхание. Кривая рН в этом случае сдвигается в сторону более высоких значений .за счет удаления имеющейся и выделяющейся объемом биомассы микрофлоры двуокиси углерода.Когда температура образца микро флоры достигает требуемого значения в пределах 5-50 С, в него вносятофенольное соединение (13-ный водный раствор) из расчета 10-30 мг/л и включают секундомер. 15В результате значительного возрастания скоростей потребления кислорода и выделения микрофлорой активного ила двуокиси углерода кривые 02 и РН подвигаются в сторону сост ве ственно) нулевого значения 02 и более кислых значений рН,Завершение потребления 02 и синхронного с ним выделения двуокиси углерода регистрируется началом дви жения указателя в противоположную сторону и в этот момент секундомер останавливается.Внесение в образец микрофлоры в любой момент поспе начала движе- звния указателя потенциометра в проти воположную сторону хотя бы 1 мг/лсубстрата приводит к дополнительному потреблению кислорода и выделению двуокиси углерода,что всегда сопро.вождается замедлением движения указателя и появлению на кривой 02 и рН ступенчатого изгиба. Эти данные свидетельствуют о действительном завершении окисления внесенного ранее в 4 в количестве 10-30 мг/л субстрата и об его исчерпанности.Исходя из времени, затраченного на потребление 02 или подкисление среды, расчитывают скорость (мг/л ч) окисление субстрата и скорость окисления внесенного в контрольный образец субстрата принимают равной 1003.Такие же измерения производят с50 образцами микрофлоры сразу и в интервале времени до 48 ч после воздействия и по изменению в скорости ;(ч) окисления оценивают степень воздействия.Приведенные примеры определения55 воздействия на фенолокисляющую микрофлору структурных аналогов, коротковолнового излучения в области 254 нм, водных растворов тяжелыхметаллов, подогрева и .1 О минутногокипячения иллюстрируются в большинстве случаев кривыии потребления02 и рН.П р и .м е р 1, Воздействие наокисление Фенола предварительноговнесения в образец микрофлоры 0-ксилола,Условия определения: концентрацияактивного ила по сухому веществу2,07 г/л; расход воздуха на аэрацию1,5 л/мин; С=ЗОС- сопМ.На фиг. 1 изображены кривые потребления кислорода, полученные сиспользованием анализатора растворенног кислорода типа ЭГ-003и потенциометра ПСРпри скоростидвижения диаграммной ленты 60 мм/ч.В табл. 1 представлены значенияскоростей окисления фенола в концен.трации 10 и 30 мг/л до и после внесейия в точке 3 60 мг/л О-ксилола.Из данных табл, 1 следует, чтоокисление 30 мг/л Фенола, внесенного в образец микрофлоры в точке2 со скоростью, примерно в 1,5 разаменьшей скорости окисления 10 мг/лФенола (точка 1) вызвано ингибированием окисления Фенола избытком субстрата. Окисление же 30 мг/л фенолаточка 5) со скоростью в 1,5 разабольшей объясняется временныи ингибированием окисления фенола в присутствии О-ксилола.При определении воздействия напотребление О предварительного внесения в виде эмульсии 500 мг/л 0-ксилола, кривая потребления кислородав течение 40 мин находится на уровнеэндогенного дыхания несмотря на то,что 30 мг/л Фенола вносят в образецмикрофлоры через 2 мин после внесенияО-ксилола, Кислород на окислениефенола начинает потребляться с возрастающей скорсотью лишь спустя40 мин после внесения и в течениепоследующих 20 мин окисляется полностью.Обратимость воздействия предварительно добавленного О -ксилола наокисление Фенола.и отсутствие реакции микрофлоры на 0-ксилол в усло- .виях эксперимента позволяют допустить, что структуры, осуществляющиеначальный метаболизм Фенола, содержатся в клеточной стенке микроорганизмов или цитоплазматической мембране. Тогда обратимость воздействияПри 1 Омин выдерживании микрофло" ры в бескислородных условиях скорость окисления 10-30 мг/л м-крезола снижается примерно на 1/5; при 25 мин 9 9985О-ксилола можно объяснить летучестью о-ксилола и непрочностью образовавшихся химических связей.П р и и е р 2. Воздействие наокисление о -крезола предварительно-.го внесения в, качестве структурногоаналога анилина.Опыт 1: концентрация биомассы микрофлоры 3 г/л; аэрация с расходом.воздуха 1,5 л/мин; С=35 С. Опыт концентрация биомассы 2 - 2,8 г/л; аэрация 1,5 л/мин 1=35 С. На фиг. 2и 3 изображены кривые потребленияО до и после внесения в виде 13-но 2го водного раствора 10 мг/л анили- Ина.Значения скоростей окисления10 мг/л м-креэола (табл., 1) показывают, что в опыте 1 в присутствии10 мг/л анилиза скорость уменьшает- щся примерно а 10 раз, а в опыте 2 - в 4-5 раз.Определение воздействия анилина.на окисление м-крезола показывает,что в отличие от О-ксилола анилин 25до суток ингибирует потребление кислорода.П р и м е р 3. Определение воздействия на микрофлору активного илаодночасового облучения в условиях зф.аэрации бактерицидной лампой БУВ и защитного действия сульфаниловойкислоты, не влияющей на окислениер.крезола,Концентрация подвергнутой воздей- З 5ствию КУФ микрофлоры 2,25 г/л; аэрация 1;5 л/мин; температура при внесении субстратов 35 ОС.Колбы из кварцевого стекла с опытными образцами в течение 1 ч облучают открытой лампой БУВоблучателя.На фиг. 4 изображены кривые по;требления кислорода при внесении вобразец микрофлоры м-крезола, бутанола и ацетата натрия сразу после облучения (а), спустя 4 ч (б) и спустя 16 ч (в). На Фиг. 5 представленыкривые потребления 02 при окислениитех же субстратов образцом микрофло 56ры, в который до облучения вносят150 мг/л сульфаниловой кислоты, сразу после облучения (а) и спустя 16 ч(б) по сравнению с контрольным образцом через 16 ч (в).Результаты определения (табл. 1)5показывают., что через 16 ч после облучения КУФ в области 254 нм скорость окисления субстратов уменьшает 05 10ся на 74-90 от контроля, а в присутствии сульфаниловой кислоты - на1 О"283.П р и м е р 4, Определение воздей"ствия на микрофлору, окисляющуюЯ-крезол, тяжелых металлов (медь,серебро), которые вносят в виде водных растворов солей СцЯО и АдЮиэ расчета 3 мг/л Сцили кафф.Контрольные и опытные образцывыдерживают до внесения субстратав кислородных и бесилородны условиях, Нафиг. 6 изображена динамикакривых рН после внесения в точках1 и 2 соответственно 1 О и 30 мг/лкреэола. В табл. 2 приведены значе"ния времени подкисления и расчетнойскорости окисления й"крезола на следующий день после добавления а опытные образцы водных растворов солейметаллов. Результаты определенияпоказывают, что воздействие меди наокисление микрофлорой м-крезола более резко проявляется при выдерживании образца в бескислородных условиях, тогда как серебро во многораз снижает скорость окисления внесенного субстрата при предварительном выдерживании микрофлоры в кислородных условиях; После 16 ч выдерживания образца (б) в кислородных условиях прекращение на 1 ч аэрации удли"няет время окисления 1 О и 30 мг/л м-крезола (фиг. 6, а). Образец 3 после 16 ч выдерживания в бескислородных условиях через 1 ч. аэрации окисляет м-крезол примерно с такой же скоростью (фиг. 6; и).При добавлении в точке Д 3 1 мг/л м-крезола движение указателя замедляется, что свидетельствует об исчерпанности внесенных в точке 231 мг/л м-крезола.П р и м е р 5. Определение зависимости проявления бактерицидностимеди от времени выдерживания образца в бескислородных условиях; концентрация микрофлоры - 1,82 г/л;оаэрация 1 л/мин; 1=20 С.Результаты определения в виде переснятых с диаграммной ленты кривых РН скрость движения ленты 240 мм/ч) представлены на Фиг. 7, а значения скоростей окисления в табл. 2.1 9985более, чем наполовину, а при 1 ч15 мин - почти в 20 раз.П р и м е р 6. Определение воздействия на микрофлору активного иларастворов солей меди и серебра в зависимости от условий выдерживанияконцентрация биомассы 2 г/л; аэрация 1 л/мин; 1= 25 ОС),Результаты определения подтверждают фиг. 8; табл. 2), цто при внесении в образцы 3 мг/л Ол и Лцв виде водных растворов солей, бактерицидность меди и серебра проявляется во взаимоисключающихся условиях.8 бескислородных условиях зарегистрировано снижение скорости окисления 4 крезола на 853 за счет меди,а в кислородных - на 923 в присутствии серебра,П р и м е р /. Определение зави= 20симости бактерицидности водных растворов меди и серебра от. концентрации металлов (концентрация биомассы3,5 г/л; аэрация 1 л/мин; С=20 С).Через 16 ч после добавления в 25опытные образцы 1 и 3 мг/л растворов солей Ся + и Лц+ определяют время подкисления среды при внесении10 и 30 мг/л м-крезола.Результаты определения приведе- зОны в табл. 3.Из табл. 3 следует,цто время подкисления среды при внесении 10 и30 мг/л м-крезола увеличивается почти в 1 О раз при воздействии меди вбескислородных условиях и.серебрав кислородных, а при увеличении концентрации добавленных в виде водныхрастворов меди и серебра в 3 разавремя подкисления увеличивается для вмеди в бескислородных условиях в15 раз и для серебра в кислородныхусловиях в 11 раз, т,е, отмеченонепропорциональное увеличению концентрации усиление воздействия на микро флору активного ила водных растворовсолей меди и серебра.П р и .м е р 8. Воздействие на время подкисления среды подогрева микрофлоры активного ила в пределах20-52 оС.Подогрев аэрируемого образца дотребуемого значения температуры осуществляют на водяной бане и контролируют ртутным термометром. Сразупосле подогрева в стаканчик с образ 55цом микрофлоры помещают датчик рНметра и изменение рН среды при вне-сении в образцы 10-30 мг/л м-крезола 05 12регистрируют (при автоматическойкоррекции показаний) на диаграммепотенциометра КПС, Для температуры40 и 45"С применяются не только подогрев, но и выдерживание образцовпри такой температуре в течение5 мин. Условия определения; концентрация биомассы 2,08 г/л; аэрация1 л/мин. Результаты определения отображены на фиг. 9 в виде кривых рН,а в табл. 2 представлены значениявремени подкисления и скорости окисления 10 и 30 мг/л и-крезола приподогреве до 40, 45, 47, 48, 50 и52 о,Определение воздействия на микрофлору активного ила подогрева показывает, что в условиях опыта имеетзначение не только температура, докоторой образец однократно подогревается, но и время выдерживания образцов при данной температуре,При 40 С 5 минутное выдерживаниене отражается на времени подкисления, Выдерживание образца при 45 ОСв течение 5 мин увеличивает времяподкисления в 1,5-2 раза, что примерно равнозначно подогреву образца до 48 ОС.П р и м е р 9. Определение воздействия на микрофлору активного ила10 минутного кипячения (концентрациябиомассы 3,56. г/л; расход воздухаона аэрацию 1,5 г/мин, = 30 С) .По времени потребления кислородаконтрольным образцом расчитывают скорости окисления внесенных в концентрации 10-30 мг ацетона, ацетата натрия и м-крезола (фиг. 10, табл. 1,точки 1-8), После 10 минутного кипячения вдвое сконцентрированный по фбиомассе образец микрофлоры выдерживают 3 сут в бескислородных условиях при 30 ОС. При возобновлении аэрации.(фиг. 11, точка 1-30 Ц через1,5 ч аэрации кривая потребленияО 2 устанавливается на нулевом значении содержания кислорода, т.е, весьрастворяющийся кислород расходуется на окисление автолиэированнойбиомассы.На 20 часу аэрации в точках 2,3 и 4 (фиг. 11, табл. 1) вносят ацетат натрия, ацетон и м-крезол.Поскольку внесение ацетона не отразилось на потреблении кислорода,а ацетат натрия и м-крезол окислялись с меньшими скоростями, то результат воздействия следующий: реак13 98505 14 ция микрофлоры активного ила на ис- ких и Физических Факторов внешней точники углерода после кипячения среды.изменяется. Использование данного способа позОписываемый способ целесообразно воляет интенсифицировать изучение использовать при оценке токсичностивоздействия на микрофлору активного подаваемых на очистные сооружения ила сточных вод, содержащих токсичсточных вод, а также вновь синтези- ные компоненты, а инструментальный руемых органических соединений. Дос- характер определения создает предпотаточно высокая чувствительность сылки для автоматизации контроля способа дает возможность определе о за содержанием в сточных водах ток-ния степени воздействия на микрофло- сичных примесей в допустимых преде" ру активного ила различных химичес- лах. Таблица Скорость окисления Ъ к контролю Скоростьокислениямг/л Время потребления Точк Внесенныйсубстрат Концентрация, мг/л 3 мин 30 с 1 ОО 171 1 Фенол 102.1303 о-Ксилол 604 фенол , 10 100 14 мин 30 с 67 39 80 9 мин 18 мин3 мин 30 с 100 30 100 10 7 11 11 м-Кре зол 30 18 мин 30 с3 мин 45 с 97160 100 2 10 3 Анилин 10Бутанол 10 5 м-Крезол 1 О 200 2 мин 55 с 40 м 10 1 Этанол м-Крезол 102 Ацетат натрия 30 м-Крезол 30 2 мин 55 с 617 124 14 мин 30 с 3 мин 30 с 3 мин 10 с 171. 10 м-Крезол4 11 100 190 Анилин 10 м-Креэол 10 5 6 27 5240 97 240 мин 30 с 15 мин6 мин 10 с 7 10 а 1 10 а 2 Бутанол 10 а 3 Ацетат натрия 30 а 4 м-Крезол 10 а 5 Бутанол 10 2 мин 30 с3 мин8 мин2 мин 50 с 600 75 212 фигура1 2 1 2173.921005682